ksmaКубанский научный медицинский вестникKuban Scientific Medical Bulletin1608-62282541-9544Kuban State Medical University10.25207/1608-6228-2022-29-6-107-120ksma-2932Research ArticleКРАТКИЕ СООБЩЕНИЯBRIEF COMMUNICATIONSАнодный блок в оценке изменения проводимости нерва у наркотизированной крысы: доклиническое нерандомизированное экспериментальное исследованиеAnodal Block in Evaluation of Nerve Conduction Changes in Anesthetized Rats: Preclinical Non-Randomized Experimental Studyhttps://orcid.org/0000-0002-3971-7848ПокровскийВ. М.PokrovskiyV. M.

Покровский Владимир Михайлович — доктор медицинских наук, профессор; профессор кафедры нормальной физиологии.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Vladimir M. Pokrovskiy — Dr. Sci. (Med.), Prof., Prof. of the Department of Normal Physiology of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

pokrovskyvm@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0002-7882-2595АрделянА. Н.ArdelyanA. N.

Арделян Александр Николаевич — кандидат медицинских наук; ассистент кафедры нормальной физиологии.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Alexandr N. Ardelyan — Cand. Sci. (Med.); Assistant of the Department of Normal Physiology of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

ardel@bk.ruhttps://orcid.org/0000-0001-5604-422XТашуБ. С.TashuB. S.

Ташу Бэла Султанмуратовна — студентка 6-го курса, лечебного факультета.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Bela S. Tashu — Student of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

toktanyazova@mail.ruhttps://orcid.org/0000-0001-9045-0280АрутюнянН. А.ArutyunyanN. A.

Арутюнян Нанар Армоевна — ассистент кафедры нормальной анатомии.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Nanar A. Arutyunyan — Assistant of the Department of Normal Anatomy of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

nanararmoevna@gmail.comhttps://orcid.org/0000-0002-2317-8309ЩербаковО. Я.SherbakovO. Y.

Щербаков Олег Ярославович — студент 3-го курса, лечебного факультета.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Oleg Y. Sherbakov — Student of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

jovus-1@yandex.ruhttps://orcid.org/0000-0002-8906-2990ПилипенкоС. С.PilipenkoS. S.

Пилипенко Станислав Сергеевич — аспирант кафедры нормальной физиологии.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

тел.: +7 (918) 316-10-62

Stanislav S. Pilipenko — graduate student of the Department of Normal Physiology of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

tel.: +7 (918) 316-10-62

miker-s@mail.comhttps://orcid.org/0000-0002-1618-4655ПочешховаД. А.PocheshkhovaD. A.

Почешхова Дарина Алиевна — студентка 6-го курса, лечебного факультета.

ул. им. Митрофана Седина, д. 4, Краснодар, 350063

Darina A. Pocheshkhova — Student of the Kuban State Medical University of the Ministry of Healthcare of the Russian Federation.

Mitrofanа Sedina str., 4, Krasnodar, 350063

pochdarina2302@mail.ruФедеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской ФедерацииРоссияKuban State Medical UniversityRussian Federation202210122022296107120Copyright © Покровский В.М., Арделян А.Н., Ташу Б.С., Арутюнян Н.А., Щербаков О.Я., Пилипенко С.С., Почешхова Д.А., 20222022Покровский В.М., Арделян А.Н., Ташу Б.С., Арутюнян Н.А., Щербаков О.Я., Пилипенко С.С., Почешхова Д.А.Pokrovskiy V.M., Ardelyan A.N., Tashu B.S., Arutyunyan N.A., Sherbakov O.Y., Pilipenko S.S., Pocheshkhova D.A.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://ksma.elpub.ru/jour/article/view/2932Введение

Введение. На данный момент не существует «золотого стандарта» для функциональной оценки степени регенерации нерва. Разные исследователи в своих работах используют различные методы прямой и непрямой оценки функциональности регенерируемого нерва, имеющие свои преимущества и недостатки. К преимуществам непрямых методов относится их малоинвазивность, а к преимуществам прямых — возможность регистрации сигнала непосредственно в нерве.

Цель исследования — выявить значимые параметры изменения нейрограммы седалищного нерва наркотизированной крысы при наложении анодного блока и оценить возможность использования нейрографии в качестве метода функциональной оценки регенерации нерва.

Методы

Методы. Серия экспериментов была выполнена на  10  наркотизированных  крысах. На обнаженный седалищный нерв накладывался анод постоянного тока проксимальнее и дистальнее регистрирующих электродов, общий катод в виде иглы вкалывался   в одну из передних конечностей. Игольчатые нихромовые электроды при помощи манипулятора вводились в нерв. Регистрировалась исходная нейрограмма и нейрограмма на фоне активации анода посредством замыкания цепи постоянного тока разного напряжения для блокирования афферентного сигнала, эфферентного сигнала и афферентного и эфферентного сигналов одновременно.

Результаты

Результаты. При наложении анодного блока различного напряжения в отношении афферентного сигнала, эфферентного сигнала и афферентного и эфферентного сигналов одновременно во всех 10 экспериментах частотно-амплитудные характеристики нейрограммы достоверно изменялись по сравнению с исходной нейрограммой. Причем амплитуда нейрограммы при замыкании цепи значительно увеличивалась, а частота уменьшалась, но не так выраженно. Была выявлена зависимость изменения параметров амплитуды и частоты от величины напряжения. В большинстве случаев эта зависимость носила прямо пропорциональный характер в отношении амплитуды и обратно пропорциональный характер в отношении частоты.

Заключение

Заключение. Учитывая характер динамики нейрограммы при воздействии анодного блока, наиболее значимым параметром ее изменения является амплитуда. Изменения волоконного состава нерва при его регенерации после повреждения вызывают изменения афферентного и эфферентного сигналов, что должно отобразиться на нейрограмме по сравнению с исходным состоянием. Таким образом, в качестве модели повреждения нерва можно использовать анодный блок, а в качестве метода функциональной оценки регенерации нерва — анализ динамики параметров нейрограммы.

Background

Background. There is currently no gold standard for functional assessment of nerve regeneration. Different researchers use various methods to assess the functionality of the regenerated nerve directly and indirectly. Indirect methods have the advantage of being minimally invasive, and the benefit of direct methods is recording the signal directly in the nerve.

Objectives

Objectives. To identify significant parameters of neurogram changes in the sciatic nerve in an anaesthetized rat when the anode block is applied and to evaluate neurography as a method for functional assessment of nerve regeneration.

Methods

Methods. A series of experiments was performed on 10 anaesthetized rats. A DC anode was placed on the exposed sciatic nerve, more proximal and more distal to the recording electrodes, and a common cathode in the form of a needle was introduced into one of the forelimbs. Needle nichrome electrodes were introduced into the nerve using a manipulator. An original neurogram and a neurogram against anode activation were recorded by closing the DC circuit of different voltages to block the afferent signal, efferent signal and afferent and efferent signals simultaneously.

Results

Results. When the anodal block of different voltages was applied to the afferent signal, efferent signal, and afferent and efferent signals simultaneously in all 10 experiments, the frequency-amplitude characteristics of the neurogram changed significantly as compared to the original neurogram. The amplitude of the neurogram increased considerably, while the frequency decreased, though not so dramatically. The changes in amplitude and frequency parameters were revealed to depend on the voltage value. In most cases, this relationship was directly proportional to the amplitude and inversely proportional to the frequency.

Conclusion

Conclusion. Considering the nature of the dynamics of the neurogram when exposed to the anodal block, the most significant parameter of its change is the amplitude. Changes in nerve fibre composition during its regeneration after damage cause changes in afferent and efferent signals, which is likely to be displayed in the neurogram as compared to the initial state. Thus, the anodal block can be used as a model of nerve damage, and the analysis of the dynamics of neurogram parameters — as a method for functional assessment of nerve regeneration.

нейрограммаанодный блокчастотаамплитудаneurogramanodal blockfrequencyamplitudeДанная серия экспериментов выполнялась в рамках научного проекта № Н-21.1/30 «Совершенствование методов функциональной оценки регенерации нерва после травматического повреждения при замещении дефекта биосинтетическим аналогом», поддержанного Кубанским Научным Фондом.This series of experiments was carried out as part of scientific project No. H-21.1/30 «Improvement of methods for functional assessment of nerve regeneration after traumatic injury when replacing a defect with a biosynthetic analogue», supported by the Kuban Science Foundation.ReferencesPedrini F.A., Boriani F., Bolognesi F., Fazio N., Marchetti C., Baldini N. Cell-Enhanced Acellular Nerve Allografts for Peripheral Nerve Reconstruction: A Systematic Review and a Meta-Analysis of the Literature. Neurosurgery. 2019; 85(5): 575–604. DOI: 10.1093/neuros/nyy374Pedrini F.A., Boriani F., Bolognesi F., Fazio N., Marchetti C., Baldini N. Cell-Enhanced Acellular Nerve Allografts for Peripheral Nerve Reconstruction: A Systematic Review and a Meta-Analysis of the Literature. Neurosurgery. 2019; 85(5): 575–604. DOI: 10.1093/neuros/nyy374Zhou L.N., Zhang J.W., Liu X.L., Zhou L.H. Co-Graft of Bone Marrow Stromal Cells and Schwann Cells Into Acellular Nerve Scaffold for Sciatic Nerve Regeneration in Rats. J. Oral. Maxillofac. Surg. 2015; 73(8): 1651–1660. DOI: 10.1016/j.joms.2015.02.013Zhou L.N., Zhang J.W., Liu X.L., Zhou L.H. Co-Graft of Bone Marrow Stromal Cells and Schwann Cells Into Acellular Nerve Scaffold for Sciatic Nerve Regeneration in Rats. J. Oral. Maxillofac. Surg. 2015; 73(8): 1651–1660. DOI: 10.1016/j.joms.2015.02.013Ronchi G., Morano M., Fregnan F., Pugliese P., Crosio A., Tos P., Geuna S., Haastert-Talini K., Gambarotta G. The Median Nerve Injury Model in Pre-clinical Research - A Critical Review on Benefits and Limitations. Front. Cell Neurosci. 2019; 13: 288. DOI: 10.3389/fncel.2019.00288Ronchi G., Morano M., Fregnan F., Pugliese P., Crosio A., Tos P., Geuna S., Haastert-Talini K., Gambarotta G. The Median Nerve Injury Model in Pre-clinical Research - A Critical Review on Benefits and Limitations. Front. Cell Neurosci. 2019; 13: 288. DOI: 10.3389/fncel.2019.00288Zhang Y.R., Ka K., Zhang G.C., Zhang H., Shang Y., Zhao G.Q., Huang W.H. Repair of peripheral nerve defects with chemically extracted acellular nerve allografts loaded with neurotrophic factors-transfected bone marrow mesenchymal stem cells. Neural. Regen. Res. 2015; 10(9): 1498–1506. DOI: 10.4103/1673-5374.165523Zhang Y.R., Ka K., Zhang G.C., Zhang H., Shang Y., Zhao G.Q., Huang W.H. Repair of peripheral nerve defects with chemically extracted acellular nerve allografts loaded with neurotrophic factors-transfected bone marrow mesenchymal stem cells. Neural. Regen. Res. 2015; 10(9): 1498–1506. DOI: 10.4103/1673-5374.165523Li Y.J., Zhao B.L., Lv H.Z., Qin Z.G., Luo M. Acellular allogeneic nerve grafting combined with bone marrow mesenchymal stem cell transplantation for the repair of long-segment sciatic nerve defects: biomechanics and validation of mathematical models. Neural. Regen. Res. 2016; 11(8): 1322–1326. DOI: 10.4103/1673-5374.189198Li Y.J., Zhao B.L., Lv H.Z., Qin Z.G., Luo M. Acellular allogeneic nerve grafting combined with bone marrow mesenchymal stem cell transplantation for the repair of long-segment sciatic nerve defects: biomechanics and validation of mathematical models. Neural. Regen. Res. 2016; 11(8): 1322–1326. DOI: 10.4103/1673-5374.189198Kaizawa Y., Kakinoki R., Ikeguchi R., Ohta S., Noguchi T., Takeuchi H., Oda H., Yurie H., Matsuda S. A Nerve Conduit Containing a Vascular Bundle and Implanted With Bone Marrow Stromal Cells and Decellularized Allogenic Nerve Matrix. Cell Transplant. 2017; 26(2): 215–228. DOI: 10.3727/096368916X692951Kaizawa Y., Kakinoki R., Ikeguchi R., Ohta S., Noguchi T., Takeuchi H., Oda H., Yurie H., Matsuda S. A Nerve Conduit Containing a Vascular Bundle and Implanted With Bone Marrow Stromal Cells and Decellularized Allogenic Nerve Matrix. Cell Transplant. 2017; 26(2): 215–228. DOI: 10.3727/096368916X692951Meder T., Prest T., Skillen C., Marchal L., Yupanqui V.T., Soletti L., Gardner P., Cheetham J., Brown B.N. Nerve-specific extracellular matrix hydrogel promotes functional regeneration following nerve gap injury. NPJ Regen. Med. 2021; 6(1): 69. DOI: 10.1038/s41536-021-00174-8Meder T., Prest T., Skillen C., Marchal L., Yupanqui V.T., Soletti L., Gardner P., Cheetham J., Brown B.N. Nerve-specific extracellular matrix hydrogel promotes functional regeneration following nerve gap injury. NPJ Regen. Med. 2021; 6(1): 69. DOI: 10.1038/s41536-021-00174-8Karimi Khezri M., Turkkan A., Koc C., Salman B., Levent P., Cakir A., Kafa I.M., Cansev M., Bekar A. Uridine treatment improves nerve regeneration and functional recovery in a rat model of sciatic nerve injury. Turk. Neurosurg. 2021. DOI: 10.5137/1019-5149.JTN.36142-21.2Karimi Khezri M., Turkkan A., Koc C., Salman B., Levent P., Cakir A., Kafa I.M., Cansev M., Bekar A. Uridine treatment improves nerve regeneration and functional recovery in a rat model of sciatic nerve injury. Turk. Neurosurg. 2021. DOI: 10.5137/1019-5149.JTN.36142-21.2Wang Y., Li W.Y., Jia H., Zhai F.G., Qu W.R., Cheng Y.X., Liu Y.C., Deng L.X., Guo S.F., Jin Z.S. KLF7-transfected Schwann cell graft transplantation promotes sciatic nerve regeneration. Neuroscience. 2017; 340: 319–332. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2016.10.069Wang Y., Li W.Y., Jia H., Zhai F.G., Qu W.R., Cheng Y.X., Liu Y.C., Deng L.X., Guo S.F., Jin Z.S. KLF7-transfected Schwann cell graft transplantation promotes sciatic nerve regeneration. Neuroscience. 2017; 340: 319–332. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2016.10.069Xiang F., Wei D., Yang Y., Chi H., Yang K., Sun Y. Tissue-engineered nerve graft with tetramethylpyrazine for repair of sciatic nerve defects in rats. Neurosci. Lett. 2017; 638: 114–120. DOI: 10.1016/j.neulet.2016.12.Xiang F., Wei D., Yang Y., Chi H., Yang K., Sun Y. Tissue-engineered nerve graft with tetramethylpyrazine for repair of sciatic nerve defects in rats. Neurosci. Lett. 2017; 638: 114–120. DOI: 10.1016/j.neulet.2016.12.Wang H., Wu J., Zhang X., Ding L., Zeng Q. Study of synergistic role of allogenic skin-derived precursor differentiated Schwann cells and heregulin-1β in nerve regeneration with an acellular nerve allograft. Neurochem. Int. 2016; 97: 146–153. DOI: 10.1016/j.neuint.2016.04.003Wang H., Wu J., Zhang X., Ding L., Zeng Q. Study of synergistic role of allogenic skin-derived precursor differentiated Schwann cells and heregulin-1β in nerve regeneration with an acellular nerve allograft. Neurochem. Int. 2016; 97: 146–153. DOI: 10.1016/j.neuint.2016.04.003Nicolai E.N., Settell M.L., Knudsen B.E., McConico A.L., Gosink B.A., Trevathan J.K., Baumgart I.W., Ross E.K., Pelot N.A., Grill W.M., Gustafson K.J., Shoffstall A.J., Williams J.C., Ludwig K.A. Sources of off-target effects of vagus nerve stimulation using the helical clinical lead in domestic pigs. J. Neural. Eng. 2020; 17(4): 046017. DOI: 10.1088/1741-2552/ab9db8Nicolai E.N., Settell M.L., Knudsen B.E., McConico A.L., Gosink B.A., Trevathan J.K., Baumgart I.W., Ross E.K., Pelot N.A., Grill W.M., Gustafson K.J., Shoffstall A.J., Williams J.C., Ludwig K.A. Sources of off-target effects of vagus nerve stimulation using the helical clinical lead in domestic pigs. J. Neural. Eng. 2020; 17(4): 046017. DOI: 10.1088/1741-2552/ab9db8Silveira C., Brunton E., Spendiff S., Nazarpour K. Influence of nerve cuff channel count and implantation site on the separability of afferent ENG. J. Neural. Eng. 2018; 15(4): 046004. DOI: 10.1088/1741-2552/aabca0Silveira C., Brunton E., Spendiff S., Nazarpour K. Influence of nerve cuff channel count and implantation site on the separability of afferent ENG. J. Neural. Eng. 2018; 15(4): 046004. DOI: 10.1088/1741-2552/aabca0Werdin F., Grüssinger H., Jaminet P., Kraus A., Manoli T., Danker T., Guenther E., Haerlec M., Schaller H.E., Sinis N. An improved electrophysiological method to study peripheral nerve regeneration in rats. J. Neurosci. Methods. 2009; 182(1): 71–77. DOI: 10.1016/j.jneumeth.2009.05.017Werdin F., Grüssinger H., Jaminet P., Kraus A., Manoli T., Danker T., Guenther E., Haerlec M., Schaller H.E., Sinis N. An improved electrophysiological method to study peripheral nerve regeneration in rats. J. Neurosci. Methods. 2009; 182(1): 71–77. DOI: 10.1016/j.jneumeth.2009.05.017Kent A.R., Grill W.M. Model-based analysis and design of nerve cuff electrodes for restoring bladder function by selective stimulation of the puden dal nerve. J. Neural. Eng. 2013; 10(3): 036010. DOI: 10.1088/1741-2560/10/3/036010Kent A.R., Grill W.M. Model-based analysis and design of nerve cuff electrodes for restoring bladder function by selective stimulation of the pudendal nerve. J. Neural. Eng. 2013; 10(3): 036010. DOI: 10.1088/1741-2560/10/3/036010Chu J.U., Song K.I., Han S., Lee S.H., Kim J., Kang J.Y., Hwang D., Suh J.K., Choi K., Youn I. Improvement of signal-to-interference ratio and signal-to-noise ratio in nerve cuff electrode systems. Physiol. Meas. 2012; 33(6): 943–967. DOI: 10.1088/0967-3334/33/6/943Chu J.U., Song K.I., Han S., Lee S.H., Kim J., Kang J.Y., Hwang D., Suh J.K., Choi K., Youn I. Improvement of signal-to-interference ratio and signal-to-noise ratio in nerve cuff electrode systems. Physiol. Meas. 2012; 33(6): 943–967. DOI: 10.1088/0967-3334/33/6/943Sabetian P., Popovic M.R., Yoo P.B. Optimizing the design of bipolar nerve cuff electrodes for improved recording of peripheral nerve activity. J. Neural. Eng. 2017; 14(3): 036015. DOI: 10.1088/1741-2552/aa6407Sabetian P., Popovic M.R., Yoo P.B. Optimizing the design of bipolar nerve cuff electrodes for improved recording of peripheral nerve activity. J. Neural. Eng. 2017; 14(3): 036015. DOI: 10.1088/1741-2552/aa6407Davis T.T., Day T.F., Bae H.W., Rasouli A. Femoral Neurogram Before Transpsoas Spinal Access at L4-5 Intervertebral Disk Space: A Proposed Screening Tool. J. Spinal. Disord. Tech. 2015; 28(7): E400– E404. DOI: 10.1097/BSD.0b013e31829cc16cDavis T.T., Day T.F., Bae H.W., Rasouli A. Femoral Neurogram Before Transpsoas Spinal Access at L4-5 Intervertebral Disk Space: A Proposed Screening Tool. J. Spinal. Disord. Tech. 2015; 28(7): E400–E404. DOI: 10.1097/BSD.0b013e31829cc16cKoh R.G.L., Zariffa J., Jabban L., Yen S.C., Donaldson N, Metcalfe BW. Tutorial: a guide to techniques for analysing recordings from the peripheral nervous system. J. Neural. Eng. 2022; 19(4). DOI: 10.1088/1741-2552/ac7d74Koh R.G.L., Zariffa J., Jabban L., Yen S.C., Donaldson N, Metcalfe BW. Tutorial: a guide to techniques for analysing recordings from the peripheral nervous system. J. Neural. Eng. 2022; 19(4). DOI: 10.1088/1741-2552/ac7d74van Neck J.W., de Kool B.S., Hekking-Weijma J., Walbeehm E.T., Visser G.H., Blok J.H. Histological validation of ultrasound-guided neurography in early nerve regeneration. Muscle. Nerve. 2009; 40(6): 967–975. DOI: 10.1002/mus.21405van Neck J.W., de Kool B.S., Hekking-Weijma J., Walbeehm E.T., Visser G.H., Blok J.H. Histological validation of ultrasound-guided neurography in early nerve regeneration. Muscle. Nerve. 2009; 40(6): 967–975. DOI: 10.1002/mus.21405Tan D.W., Schiefer M.A., Keith M.W., Anderson J.R., Tyler J., Tyler D.J. A neural interface provides long-term stable natural touch perception. Sci. Transl. Med. 2014; 6(257): 257ra138. DOI: 10.1126/scitranslmed.3008669Tan D.W., Schiefer M.A., Keith M.W., Anderson J.R., Tyler J., Tyler D.J. A neural interface provides long-term stable natural touch perception. Sci. Transl. Med. 2014; 6(257): 257ra138. DOI: 10.1126/scitranslmed.3008669Horcholle-Bossavit G., Quenet B. Methods for frequency and correlation analyses of neurograms. MethodsX. 2021; 8: 101258. DOI: 10.1016/j.mex.2021.101258Horcholle-Bossavit G., Quenet B. Methods for frequency and correlation analyses of neurograms. MethodsX. 2021; 8: 101258. DOI: 10.1016/j.mex.2021.101258Provitera V., Piscosquito G., Manganelli F., Mozzillo S., Caporaso G., Stancanelli A., Borreca I., Di Caprio G., Santoro L., Nolano M. A Model to Study Myelinated Fiber Degeneration and Regeneration in Human Skin. Ann. Neurol. 2020; 87(3): 456–465. DOI: 10.1002/ana.25662Provitera V., Piscosquito G., Manganelli F., Mozzillo S., Caporaso G., Stancanelli A., Borreca I., Di Caprio G., Santoro L., Nolano M. A Model to Study Myelinated Fiber Degeneration and Regeneration in Human Skin. Ann. Neurol. 2020; 87(3): 456–465. DOI: 10.1002/ana.25662Silverman H.A., Stiegler A., Tsaava T., Newman J., Steinberg B.E., Masi E.B., Robbiati S., Bouton C., Huerta P.T., Chavan S.S., Tracey K.J. Standardization of methods to record Vagus nerve activity in mice. Bioelectron. Med. 2018; 4: 3. DOI: 10.1186/s42234-018-0002-ySilverman H.A., Stiegler A., Tsaava T., Newman J., Steinberg B.E., Masi E.B., Robbiati S., Bouton C., Huerta P.T., Chavan S.S., Tracey K.J. Standardization of methods to record Vagus nerve activity in mice. Bioelectron. Med. 2018; 4: 3. DOI: 10.1186/s42234-018-0002-yГанцгорн Е.В., Хлопонин Д.П., Макляков Ю.С. Анализ выживаемости и частотно-пространственного распределения электроэнцефалографических показателей крыс при глобальной ишемии головного мозга. Кубанский научный медицинский вестник. 2017; 1(2): 43–49. DOI: 10.25207/1608-6228-2017-2-43-49Gantsgorn E.V., Khloponin D.P., Maklyakov Yu.S. Survival analysis and spatial-frequency distribution of eeg-indices in rats’ global cerebral ischemia. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2017; 1(2): 43–49. DOI: 10.25207/1608-6228-2017-2-43-49

The authors declare that there are no conflicts of interest present.