РЕЗУЛЬТАТЫ УСТРАНЕНИЯ РЕГРЕССИОННОЙ ТРАНСФОРМАЦИИ АЛЬВЕОЛЯРНОГО ГРЕБНЯ ЧЕЛЮСТЕЙ С ПРИМЕНЕНИЕМ АУТОГЕННОЙ СТРОМАЛЬНО-ВАСКУЛЯРНОЙ ФРАКЦИИ ЖИРОВОЙ ТКАНИ

Цель. Исследование выполнено с целью оценить размеры, структуру и способность к жевательной нагрузке реконструированного с применением аутогенной стромальноваскулярной фракции жировой ткани (СВФ-ЖТ) челюстного гребня в долгосрочном исследовании (10 лет).

Материалы и методы. В исследовании принял участие 141 пациент (61 мужчина, 80 женщин) в возрасте от 45 до 78 лет (средний возраст 57 лет) с регрессионной трансформацией альвеолярного гребня верхней и нижней челюсти. В тестируемой группе (ТГ) проведено 112 костнопластических операций с применением аутогенной стромально-васкулярной фракции жировой ткани (СВФ-ЖТ) и последующей установкой 297 дентальных имплантатов в реконструированный гребень для восстановления жевательной функции; в контрольной группе (КГ) — 117 операций, выполненных по общепринятым методикам с установкой 323 искусственных опор. Размеры альвеолярного гребня и опорную функцию реконструированной кости оценивали в сроки до 10 лет. В гистологическом и гистоморфометрическом исследовании изучено 27 трепанбиоптатов реконструированной кости, полученных в ходе дентальной имплантации. Цифровой материал обработан традиционными методами вариационной статистики.

Результаты. Результаты сравнительного исследования подтверждают преимущества предложенного подхода с использованием СВФ-ЖТ перед текущими общепринятыми методами реконструкции альвеолярного гребня челюстей. Применение СВФ-ЖТ в составе костнопластического материала позволяет достичь необходимой степени аугментации атрофированного участка кости с минимальным риском осложнений и реопераций (8% и 21% случаев в ТГ и КГ соответственно, p=0,231), оптимальными морфологическими характеристиками регенерата (40,14±3,36 и 24,23±2,63% жизнеспособной минерализованной костной ткани на срезах трепанбиоптатов из ТГ и КГ соответственно, p=0,001), что обеспечивает надежную остеоинтеграцию искусственных опор в реконструированном альвеолярном гребне и высокую эффективность ортопе дического лечения с опорой на имплантаты в сроки до 10 лет (97% и 88% в ТГ и КГ соответственно, р˂0,001).

Заключение. Предлагаемый инновационный подход может быть рекомендован в качестве основы для хирургического протокола при выраженной регрессионной трансформации альвеолярного гребня челюстей. Это позволит более успешно и предсказуемо восстанавливать функцию жевания с применением искусственных опор в реконструированной кости у этой категории пациентов. 

1. Esposito M., Worthington H. V., Thomsen P., Coulthard P. Interventions for replacing missing teeth: different times for loading dental implants. Cochrane Database Syst Rev. 2004; (3): CD003878. DOI: 10.1002/14651858.CD003878.pub2

2. Деев Р. В., Дробышев А. Ю., Бозо И. Я. Ординарные и активированные остеопластические материалы. Вестник травматологии и ортопедии им. Н. Н. Приорова. 2015; 1: 51–65.

3. Khojasteh A., Morad G., Behnia H. Clinical importance of recipient site characteristics for vertical ridge augmentation: A systematic review of literature and proposal of a classifi cation. J Oral Implantol. 2013; 39(3): 386–98. DOI: 10.1563/AAID-JOI-D-11-00210

4. Felice P., Pistilli R., Lizio G., Pellegrino G., Nisii A., Marchetti C. Inlay versus onlay iliac bone grafting in atrophic posterior mandible: a prospective controlled clinical trial for the comparison of two techniques. Clin. Implant. Dent. Relat. Res. 2009; 11 (Suppl 1): 69–82. DOI: 10.1111/j.1708-8208.2009.00212.x

5. Перова М. Д., Козлов В. А., Мельник Е. А., Карпюк В. Б., Саркисов А. Я. Новые возможности замещения больших дефектов челюстей при лечении одонтогенных кист с помощью васкулярно-стромальноклеточной фракции. Институт стоматологии. 2011; 1(50): 107–109.

6. Calori G. M., Mazza E., Colombo M., Ripamonti C. The use of bone-graft substitutes in large bone defects: any specifi c needs? Injury. 2011; 42 (Suppl 2): 56–63. DOI: 10.1016/j.injury.2011.06.011

7. Карпюк В. Б., Перова М. Д., Шубич М. Г. К изучению свежевыделенных аутологичных стромальных клеток подкожной жировой клетчатки для регенерации биологических тканей. Институт стоматологии. 2009; 3(44): 74–76.

8. Карпюк В. Б., Лаврешин П. М., Шубич М. Г., Понкина О. Н., Павлюк К. С., Бережной Д. В. Изучение эффективности применения васкулярно-стромальноклеточной фракции при контурной пластике мягких тканей лица (по данным МРТ на примере липофилинга губ). Анналы пластической, реконструктивной и эстетической хирургии. 2014; 3: 57–63.

9. Dominici M., Le Blanc K., Mueller I., Slaper-Cortenbach I., Marini F., Krause D., Deans R., Keating A., Prockop Dj., Horwitz E. Minimal criteria for defi ning multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement. Cytotherapy. 2006; 8(4): 315–317. DOI: 10.1080/14653240600855905

10. Mildmay-White A., Khan W. Cell surface markers on adipose-derived stem cells: a systematic review. Curr. Stem. Cell Res. Ther. 2017; 12(6): 484–492. DOI: 10. 2174/1574888X11666160429122133

11. Nary Filho H., Pinto T. F., de Freitas C. P., Ribeiro-Junior P. D., dos Santos P. L., Matsumoto M. A. Autogenous bone grafts contamination after exposure to the oral cavity. J. Craniofac. Surg. 2014; 25(2): 412–414. DOI: 10.1097/SCS.0000000000000682

12. Gupta N., Krasnodembskaya A., Kapetanaki M., Mouded M., Tan X., Serikov V., Matthay M. A. Mesenchymal stem cells enhance survival and bacterial clearance in murine Escherichia coli pneumonia. Thorax. 2012; 67(6): 533–539. DOI: 10.1136/thoraxjnl-2011-201176

13. Mezey E., Nemeth K. Mesenchymalstem cells and infectious diseases: Smarter than drugs. Immunol. Lett. 2015; 168(2): 208–214. DOI: 10.1016/j.imlet.2015.05.020

14. Sung D. K., Chang Y. S., Sung S. I., Yoo H. S., Ahn S. Y., Park W. S. Antibacterial effect of mesenchymalstem cells against Escherichia coli is mediated by secretion of beta- defensin-2 via toll-like receptor 4 signalling. Cell. Microbiol. 2016; 18(3): 424–436. DOI: 10.1111/cmi.12522

15. Badylak S. F., Valentin J. E., Ravindra A. K., McCabe G. P., Stewart-Akers A. M. Macrophage phenotype as a determinant of biologic scaffold remodeling. Tissue Eng. Part A. 2008; 14(11): 1835–1842. DOI: 10.1089/ten.tea.2007.0264

16. Dong Z., Peng Z., Chang Q., Lu F. The survival condition and immunoregulatory function of adipose stromal vascular fraction (SVF) in the early stage of nonvascularized adipose transplantation. PLoS One. 2013; 8(11): e80364

17. Bowles A. C., Wise R. M., Gerstein B. Y. et al. Immunomodulatory effects of adipose stromal vascular fractioncells promote alternative activation macrophages to repair tissue damage. Stem. Cells. 2017; 35(10): 2198–2207. DOI: 10.1002/stem.2689

18. Парфенова Е. В., Ткачук В. А., Калинина Н. И., Трактуев Д. О., Ратнер Е. И., Талицкий К. А., Марч К. Л., Джонстон Б., Рахмат-Заде Т. М., Цоколаева З. И. Поиск новых «инструментов» для терапевтического ангиогенеза. Молекулярная медицина. 2006; 2: 10–23.

19. Koh Y. J., Koh B. I., Kim H., Joo H. J., Jin H. K., Jeon J., Choi C., Lee D. H., Chung J. H., Cho C. H., Park W. S., Ryu J. K., Suh J. K., Koh G. Y. Stromal vascular fraction from adipose tissue forms profound vascular network through the dynamic reassembly of blood endothelial cells. Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 2011; 31(5): 1141–1150. DOI: 10.1161/ATVBAHA.110.218206

20. Zakhari J. S., Zabonick J., Gettler B., Williams S. K. Vasculogenic and angiogenic potential of adipose stromal vascular fraction cell populations in vitro. In Vitro Cell Dev. Biol. Anim. 2018; 54(1): 32–40. DOI: 10.1007/s11626-017-0213-7

21. Зерницкий А. Ю., Медведева Е. Ю. Роль объема мягких тканей вокруг дентальных имплантатов в развитии периимплантита. Институт стоматологии. 2012; 1(54): 80–81.

22. Bassetti R. G., Stahli A., Bassetti M. A., Sculean A. Soft tissue augmentation procedures at second-stage surgery: a systematic review. Clin. Oral Investig. 2016; 20(7): 1369–1387. DOI: 10.1007/s00784-016-1815-2

23. Lin G. H., Chan H. L., Wang H. L. The signifi cance of keratinized mucosa on implant health: a systematic review. J. Periodontol. 2013; 84(12): 1755–1767. DOI: 10.1902/jop.2013.120688

24. Gjerde С., Mustafa K., Hellem S., Rojewski M., Gjengedal H., Yassin M. A., Feng X., Skaale S., Berge T., Rosen A., Shi X. Q., Ahmed A. B., Gjertsen B. T., Schrezenmeier H., Layrolle P. Cell therapy induced regeneration of severely atrophied mandibular bone in a clinical trial. Stem. Cell. Res. Ther. 2018; 9(1): 213. DOI: 10.1186/s13287-018-0951-9

25. Osugi M., Katagiri W., Yoshimi R., Inukai T., Hibi H., Ueda M. Conditioned media from mesenchymal stem cells enhanced bone regeneration in rat calvarial bone defects. Tissue Eng. Part A. 2012; 18(13–14): 1479–1489. DOI: 10.1089/ten.TEA.2011.0325

26. Hirose Y., Funahashi Y., Matsukawa Y. et al. Comparison of trophic factors secreted from human adipose-derived stromal vascular fraction with those from adipose-derived stromal/stem cells in the same individuals. Cytotherapy. 2018; 20(4): 589–591. DOI: 10.1016/j.jcyt.2018.02.001