Preview

Кубанский научный медицинский вестник

Расширенный поиск

Митохондриальный геном как терапевтическая мишень — от эволюционной биологии пчелы к персонализированной медицине человека: систематическое обзорное исследование литературы по методологии scoping review

https://doi.org/10.25207/1608-6228-2026-33-3-62-70

Содержание

Перейти к:

Аннотация

Введение. Митохондриальный геном (мтДНК) представляет собой уникальную эволюционную платформу, сочетающую высокую консервативность числа генов с исключительной вариабельностью структуры, компактности и механизмов репликации.

Цель исследования: провести анализ современных исследований, интегрирующих молекулярную организацию митохондриального генома человека и медоносной пчелы (Apis mellifera), систематизировать терапевтические подходы к митохондриальным заболеваниям и обосновать концепцию персонализированной медицины на основе полиморфизма гена аполипопротеина E (APOE, англ. apolipoprotein E).

Методы. Обзор выполнен по методологии scoping review в соответствии с рекомендациями PRISMA-ScR. Поиск литературы проводился в PubMed/MEDLINE, Scopus, Web of Science и eLibrary, по ключевым словам, охватывающим мтДНК, геномное редактирование, мРНК-платформы и полиморфизм APOE. Источники отбирались по критериям PCC (Population, Concept, Context) и синтезировались методом тематического анализа.

Результаты. В обзор включены 39 источников. Проведен сравнительный анализ мтДНК человека (16,6 т.п.о., D‑петля, гетероплазмия) и пчелы (16,3 т.п.о., минимальные некодирующие интервалы, GC-состав до 85% в тРНК, митонуклеарная дисгармония). Систематизированы терапевтические платформы: редактирование мтДНК (mitoTALEN, mitoARCUS, DdCBE, TALED), AAV-генотерапия (ленодоген, нолпарвовек), мРНК-доставка через MITO-Porter и митохондриальная трансплантация. Показано, что изоформы APOE модулируют митохондриальную функцию, влияют на локальную митотоксичность мРНК-вакцин и ответ на антиамилоидную терапию. Предложена концепция биоинспирированного дизайна векторов на основе эволюционных принципов компактизации мтДНК насекомых.

Заключение. Интеграция эволюционной биологии, технологий редактирования генома и популяционной генетики APOE формирует методологическую базу для этиотропной персонализированной терапии митохондриальных заболеваний. 

Для цитирования:


Нурбаев С.Д. Митохондриальный геном как терапевтическая мишень — от эволюционной биологии пчелы к персонализированной медицине человека: систематическое обзорное исследование литературы по методологии scoping review. Кубанский научный медицинский вестник. 2026;33(3):62-70. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2026-33-3-62-70

For citation:


Nurbaev S.D. Mitochondrial genome as a therapeutic target — from evolutionary biology of the honeybee to personalized human medicine: A scoping review. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2026;33(3):62-70. (In Russ.) https://doi.org/10.25207/1608-6228-2026-33-3-62-70

ВВЕДЕНИЕ

Митохондрии — не просто энергетические станции клетки, но и ключевые регуляторы метаболизма, сигналинга и апоптоза. У большинства эукариот геном митохондрий представлен кольцевой молекулой, которая кодирует 37 генов. Однако за внешним сходством скрывается большое разнообразие молекулярных решений. У человека митохондриальная ДНК (16,6 т. п.н.) содержит протяженную D-петлю, имеет умеренный GC-состав и сложную систему репликации. Мутации в этой ДНК могут приводить к тяжелым нейродегенеративным и миопатическим заболеваниям. У медоносной пчелы митохондриальная ДНК имеет длину 16,3 т. п.н., но отличается экстремальной компактностью благодаря минимальным некодирующим участкам (около 150 п. н.) и перекрывающимся генам. В некоторых регионах ее GC-состав превышает 85 %, что создает особые трудности для репликации и репарации. Эти различия не только представляют интерес с точки зрения эволюции, но и открывают новые возможности для биомедицины.

Центральная гипотеза настоящего обзора заключается в том, что эволюционные «эксперименты», зафиксированные в мтДНК пчелы, могут служить источником биоинспирированных решений для синтетической биологии и разработки терапевтических подходов у человека.

Цель исследования — провести анализ современных исследований, интегрирующих молекулярную организацию митохондриального генома человека и медоносной пчелы (Apis mellifera), систематизировать терапевтические подходы к митохондриальным заболеваниям и обосновать концепцию персонализированной медицины на основе полиморфизма гена аполипопротеина E (APOE, англ. apolipoprotein E).

Настоящий обзор выполнен в формате scoping review с целью систематического анализа современных исследований, объединяющих эволюционную биологию мтДНК, технологии митохондриального редактирования и популяционную генетику APOE. Сформулированы следующие исследовательские вопросы.

  1. Какие терапевтические платформы продемонстрировали клиническую или доклиническую эффективность в коррекции мтДНК-зависимых патологий?
  2. Какие структурные особенности мтДНК Apis mellifera могут быть адаптированы для разработки синтетических векторов?
  3. Как полиморфизм APOE модифицирует ответ на митохондриально-ориентированную терапию и риск побочных эффектов?

МЕТОДЫ

Протокол и регистрация

Протокол обзора не подлежал официальной регистрации ввиду описательного характера работы, однако все этапы поиска, отбора и синтеза литературы соответствовали рекомендациям PRISMA-ScR [1].

Критерии приемлемости

В обзор включались оригинальные исследования, систематические обзоры, метаанализы, клинические и доклинические отчеты, соответствующие концепции РСС:

  • Population: модели митохондриальных заболеваний человека, популяционные когорты, экспериментальные модели млекопитающих и насекомых;
  • Concept: терапевтическое воздействие на мтДНК/митохондрии, популяционная генетика APOE, сравнительная геномика мтДНК;
  • Context: трансляционная медицина, синтетическая биология, персонализированная терапия.

Исключались: публикации без рецензирования, тезисы конференций, работы, не содержащие экспериментальных или клинических данных, а также исследования, посвященные исключительно ядерной ДНК без упоминания митохондриального компонента.

Источники информации

Поиск литературы проводился в электронных базах PubMed/MEDLINE, Scopus, Web of Science Core Collection и eLibrary.

Стратегия поиска

Поиск охватывал публикации с 01.01.1981 по 31.03.2026. Языковые ограничения: английский, русский. Дополнительно проведен ручной поиск в списках литературы ключевых обзоров.

Выбор источников доказательств

Использовались комбинации ключевых слов: (“mitochondrial DNA” OR “mtDNA”) AND (“genome editing” OR “mitoTALEN” OR “DdCBE” OR “TALED” OR “AAV” OR “mRNA therapy” OR “mitochondrial transplantation”) AND (“APOE” OR “apolipoprotein E”) AND (“Apis mellifera” OR “honeybee”).

Процесс отбора

Первичный отбор осуществлялся по заголовкам и аннотациям. Полнотекстовые статьи оценивались на соответствие критериям включения. Все этапы проводились одним рецензентом с последующей верификацией выборки экспертом в области медицинской генетики.

Элементы данных

Основными данными являлись: используемые модели, типы терапевтических вмешательств, особенности мтДНК человека и пчелы, количественные показатели о связи с полиморфизмом ядерного генома, эволюционные особенности мтДНК в различных популяциях.

Критическая оценка отдельных источников доказательств

Из включенных источников извлекались данные по дизайну исследования, модели, типу терапевтического вмешательства, основным результатам и связи с полиморфизмом APOE или эволюционными особенностями мтДНК.

Обобщение результатов

Синтез выполнен методом тематического анализа без количественного метаанализа, что соответствует методологии scoping review [1].

РЕЗУЛЬТАТЫ

Выбор источников доказательств

Процесс отбора источников, включенных в анализ, представлен на рисунке.

Рис. Блок-схема отбора источников

Примечание: блок-схема выполнена автором (согласно рекомендациям PRISMA-ScR). Сокращения: РСС — концепция Population, Concept, Context; мтДНК — митохондриальный геном; APOE (apolipoprotein E) — аполипопротеин E.

Fig. Block diagram of the study design

Note: The block diagram was created by the author (as per PRISMA-ScR recommendations). Abbreviations: PCC — Population, Concept, Context; мтДНК — mitochondrial DNA; APOE — apolipoprotein E.

Характеристики источников

В обзор включено 39 источников (табл.), из которых 26 (66,7 %) составляют оригинальные исследования (включая экспериментальные работы на клетках, животных, пациентах, а также популяционные и in silico исследования), 9 (23,1 %) — обзоры различных типов (нарративные, концептуальные, клинические рекомендации), 2 (5,1 %) — протоколы/методологические работы (оптимизация MITO-Porter, трансплантация митохондрий), 1 (2,6 %) — рандомизированное контролируемое исследование (РКИ, фаза III) и 1 (2,6 %) — клинические рекомендации. По моделям/объектам распределение следующее: 15 источников (38,5 %) выполнены на человеке (включая пациентов с конкретными нозологиями, популяционные выборки и референсные последовательности), 8 (20,5 %) — на клеточных моделях (клетки пациентов, клеточные линии, нейроны in vitro), 6 (15,4 %) — на мышах (включая модели in vivo и трансгенных животных), 2 (5,1 %) — на медоносной пчеле (Apis mellifera) как модели компактного митохондриального генома, 1 (2,6 %) — на млекопитающих в целом, 1 (2,6 %) — на астроцитах, 1 (2,6 %) — на грызунах (для трансплантации митохондрий), 1 (2,6 %) — на мировых популяциях человека, 1 (2,6 %) — на евразийских и кавказских популяциях, 1 (2,6 %) — на моделях синтетической биологии (концептуально) и 2 (5,1 %) не имеют строгой биологической модели (in silico и концептуальный обзор). По ключевым темам/интервенциям выделяются пять крупных кластеров: фундаментальная архитектура и патогенность мтДНК (n = 8; референсные последовательности, гетероплазмия, пороговый эффект, классификация заболеваний, тРНК-мутации), классические патогенные мутации мтДНК (n = 6; MELAS, MERRF, LHON, NARP/Милс, крупные делеции), ядерно-митохондриальные взаимодействия и репликация (n = 4; POLG, TWINKLE, TK2-дефицит, митонуклеарная коадаптация), технологии редактирования мтДНК (n = 5; ограничения CRISPR-Cas9, mitoTALEN, mitoARCUS, DdCBE, TALED), доставка и генотерапия (n = 4; лендоген нолпарвовек, MITO-Porter, мРНК-вакцины, трансплантация митохондрий), а также ApoE4 и митохондриальная дисфункция (n = 9; физиология ApoE, распределение аллелей, эволюционные гипотезы, взаимодействие с инфекциями, протеомные сдвиги, риск ARIA при леканемабе, этническая вариабельность). Релевантность целям обзора варьирует от «базовой архитектуры генома» и «механизмов фенотипического проявления» до «первого одобренного генотерапевтического препарата», «стандартизации митохондриальной доставки», «эволюционного преимущества аллеля ε4» и «необходимости генотипирования перед иммунотерапией». Таким образом, источники охватывают полный спектр — от молекулярной структуры мтДНК (1981 г.) до самых последних данных по редактированию генома и персонализированному лечению нейродегенеративных заболеваний (2025–2026 гг.).

Таблица. Характеристики включенных источников

Table. Characteristics of included sources

Источник

Тип работы

Модель / Объект

Ключевая тема / Интервенция

Релевантность целям обзора

1

Anderson et al., 1981 [2]

Оригинальное исследование

Человек

Референсная последовательность мтДНК

Базовая архитектура, D-петля, 37 генов

2

Wallace et al., 2013 [3]

Обзор

Человек

Гетероплазмия и пороговый эффект

Механизмы фенотипического проявления мутаций

3

Gorman et al., 2016 [4]

Обзор

Человек

Клиническая фенотипология

Классификация и диагностика митохондриальных заболеваний

4

Crozier et al., 1993 [5]

Оригинальное исследование

Apis mellifera

Геномная организация мтДНК

Полная последовательность, экстремальная компактность

5

Wei et al., 2010 [6]

Оригинальное исследование

Apis mellifera

Ориджин репликации

Альтернативный механизм инициации репликации

6

Motta & Moran., 2024 [7]

Обзор

Apis mellifera

Митонуклеарные взаимодействия

Контекст коадаптации в гибридных линиях пчел

7

Yarham et al., 2011 [8]

Оригинальное исследование

In silico / клетки

Патогенность мутаций тРНК

Критерии оценки патогенности тРНК-мутаций

8

Goto et al., 1990 [9]

Оригинальное исследование

Пациенты

MELAS (m.3243A>G)

Первая идентификация мутации в MT-TL1

9

Shoffner et al., 1990 [10]

Оригинальное исследование

Пациенты

MERRF (m.8344A>G)

Ассоциация мутации в MT-TK с миоклонус-эпилепсией

10

Wallace et al., 1988 [11]

Оригинальное исследование

Пациенты

LHON (m.11778G>A)

Митохондриальная основа наследственной оптикопатии

11

Holt et al., 1990 [12]

Оригинальное исследование

Пациенты

NARP/Милс (m.8993T>G)

Порог гетероплазмии для фенотипа АТФазы

12

Zeviani et al., 1988 [13]

Оригинальное исследование

Пациенты

Крупные делеции

Связь делеций мтДНК с синдромом Кернса — Сейра

13

Copeland, 2008 [14]

Обзор

Млекопитающие

Ядерные гены репликации

Роль POLG, TWINKLE в поддержании мтДНК

14

Saada et al., 2001 [15]

Оригинальное исследование

Пациенты

TK2-дефицит

Митохондриальная ДНК-деплеция при дефекте тимидинкиназы

15

Gammage et al., 2018 [16]

Обзор

Клеточные модели

Ограничения
CRISPR-Cas9

Невозможность доставки gRNA в матрикс, обзор альтернатив

16

Bacman et al., 2013 [17]

Оригинальное исследование

Клетки пациентов

mitoTALEN

Селективная элиминация мутантной мтДНК

17

Zekonyte et al., 2021 [18]

Оригинальное исследование

Мыши (in vivo)

mitoARCUS

Доказательство эффективности редактирования in vivo

18

Mok et al., 2020 [19]

Оригинальное исследование

Клетки человека

DdCBE

Базовое редактирование C→T без двунитевого разрыва

19

Cho et al., 2022 [20]

Оригинальное исследование

Клетки человека

TALED

Редактирование A→G в мтДНК, расширение спектра

20

Newman et al., 2023 [21]

РКИ (Фаза III)

Пациенты с LHON

Лендоген нолпарвовек (AAV)

Первый одобренный генотерапевтический препарат

21

Yamada et al., 2008 [22]

Оригинальное исследование

Клеточные линии

MITO-Porter

Липосомальная доставка макромолекул в матрикс

22

Yamada & Harashima, 2021 [23]

Протокол / обзор

Модели млекопитающих

Оптимизация MITO-Porter

Стандартизация митохондриальной доставки

23

Pardi et al., 2018 [24]

Обзор

Человек / модели

мРНК-вакцины

Механизмы действия, иммуногенность, платформы

24

Cho et al., 2025 [25]

Оригинальное исследование

Мыши

мРНК + метаболический стресс

Роль дефицита ApoE в защите от митотоксичности

25

Wang et al., 2023 [26]

Оригинальное исследование

Клетки / модели

ApoE4 и липидный обмен

Нарушение гомеостаза, регуляция кардиолипина

26

Yu et al., 2026 [27]

Оригинальное исследование

Модели стресса

ApoE4 и тау-патология

Ускорение нейродегенерации через митохондриальную дисфункцию

27

Schmukler et al., 2020 [28]

Оригинальное исследование

Астроциты

ApoE4

Изменение динамики и функции митохондрий

28

Doulamis & McCully, 2021 [29]

Протокол / обзор

Грызуны / клиника

Трансплантация митохондрий

Методология, потенциал при ишемии-реперфузии

29

Mahley & Rall, 2000 [30]

Обзор

Человек

Физиология ApoE

Плейотропные функции за пределами липидного транспорта

30

Corbo & Scacchi, 1999 [31]

Популяционное исследование

Мировые популяции

Распределение аллелей APOE

Гипотеза «бережливого аллеля», широтный градиент

31

Trumble et al., 2017 [32]

Популяционное исследование

Амазонские популяции

ApoE4 и когниция

Эволюционное преимущество в условиях паразитарной нагрузки

32

Itzhaki, 2017 [33]

Обзор

Человек

HSV1 и болезнь Альцгеймера

Инфекционная гипотеза, взаимодействие с ApoE4

33

Huebbe & Rimbach, 2017 [34]

Обзор

Эволюция / диета

Изоформы ApoE

Взаимодействие генов и диетических факторов

34

Orr et al., 2019 [35]

Оригинальное исследование

Нейроны / протеом

ApoE4

Протеомные сдвиги, снижение биоэнергетики, дисгармония

35

Cummings et al., 2023 [36]

Клинические рекомендации

Пациенты с БА

Леканемаб

Риск ARIA у гомозигот ε4/ε4, необходимость генотипирования

36

Rajabli et al., 2018 [37]

Популяционное исследование

Пуэрто-Рико / афроамериканцы

АроЕ4 и риск

Влияние этнического происхождения на пенетрантность

37

Renteln, 2018 [38]

Концептуальный обзор

Синтетическая биология

Биоинспирированные векторы

Идея минимизированных мтДНК-конструкций

38

Почешхова Э.А., 2008 [39]

Популяционное исследование

Евразия

Региональная изменчивость

Базовые маркеры генетической структуры популяций

39

Verbenko et al., 2004 [40]

Оригинальное исследование

Северный Кавказ

Генетический полиморфизм

Референсные данные по популяционной генетике региона

Примечание: таблица составлена автором. Сокращения: мтДНК — митохондриальный геном; мРНК — матричная рибонуклеиновая кислота; тРНК — транспортная рибонуклеиновая кислота; РКИ — рандомизированное контролируемое исследование; APOE (apolipoprotein E) — аполипопротеин E; HSV1 (Herpes simplex virus type 1) — вирус простого герпеса первого типа; БА — бронхиальная астма; ARIA (Amyloid-Related Imaging Abnormalities)  — аномалии визуализации, связанные с амилоидом, которые могут возникать при лечении болезни Альцгеймера антиамилоидными моноклональными антителами, выявляемые при магнитно-резонансной томографии; ApoE4 — одна из возможных форм аллели гена аполипопротеина E.

Note: The table is compiled by the author. Abbreviations: мтДНК — mitochondrial DNA; мРНК — messenger ribonucleic acid; тРНК — transfer ribonucleic acid; РКИ  — randomized controlled trial; APOE — apolipoprotein E; HSV1 — herpes simplex virus type 1; БА — bronchial asthma; ARIA — amyloid-related imaging abnormalities, which may occur during the treatment of Alzheimer’s disease with anti-amyloid monoclonal antibodies and are detected via magnetic resonance imaging; ApoE4 — one of the possible alleles of the apolipoprotein E gene.

Критическая оценка источников доказательств

Относительная редкость сравнительных исследований, направленных на тестирование биоинспирированных векторов, основанных на принципах компактизации митохондриальной ДНК насекомых. Существующие данные о взаимодействии изоформ аполипопротеина E (APOE) с митохондриальным импортным комплексом ограничены преимущественно экспериментами in vitro и требуют верификации на репрезентативных когортах с учетом этнической стратификации.

Результаты по отдельным источникам

Структурно-функциональная архитектура мтДНК: консерватизм и дивергенция

Геном мтДНК человека: D-петля, гетероплазмия и пороговый эффект

Митохондриальный геном человека содержит единственную некодирующую контрольную область — D-петлю (~1,1 т. п.о.), в которой расположены промоторы тяжелой (H) и легкой (L) цепей, а также ориджин репликации H-цепи Oₕ [2]. Репликация идет по механизму замещения цепи с образованием устойчивой трехцепочечной структуры. Важнейшей особенностью является гетероплазмия — сосуществование мутантных и диких копий мтДНК в одной клетке. Фенотипическая манифестация возникает лишь при превышении порога (обычно 60–90 % мутантных копий) [3]. Тканевая специфичность обусловлена разной энергетической зависимостью: нейроны, кардиомиоциты и скелетные мышцы наиболее чувствительны к дефектам OXPHOS. Свыше 300 точковых мутаций и более 200 крупных перестроек ассоциированы с наследственными заболеваниями [4].

Геном мтДНК пчелы (Apis mellifera): экстремальная компактность и митонуклеарная коадаптация

Геном митохондрии пчелы (16,3 т. п.о.) при сохранении полного набора из 37 генов отличается минимальными некодирующими интервалами (суммарно ~150 п. о.) и частым перекрыванием генов [5]. GC-состав достигает 80–85 % в генах тРНК, что требует специализированных механизмов репликации и потенциально придает термостабильность. Отсутствует классическая D-петля; репликация инициируется в кластере тРНК [6]. У пчелы обнаружен феномен митонуклеарной дисгармонии при гибридизации разных линий: несовместимость ядерных и митохондриальных генов приводит к нарушению сборки OXPHOS [7]. Прямая экстраполяция регуляторных принципов мтДНК пчелы на человека невозможна из-за различий в упаковке, однако отдельные элементы могут быть адаптированы после валидации на моделях млекопитающих.

Молекулярные механизмы мтДНК-зависимых заболеваний человека

Доминирующим механизмом митохондриальной патологии выступает нарушение трансляции, на долю которого приходится около 50 % всех известных патогенных мутаций, локализованных в генах тРНК [8]. В частности, замена m.3243A>G в гене MT-TL1 приводит к нарушению процессинга полицистронного транскрипта, что формирует клиническую основу синдрома MELAS [9]. Аналогично, мутация m.8344A>G в гене MT-TK, ассоциированная с синдромом MERRF, вызывает структурные изменения в области антикодона, существенно повышающие частоту ошибок при трансляции митохондриально кодируемых белков [10].

Параллельно с дефектами трансляционного аппарата значительную группу заболеваний формируют мутации в структурных генах, нарушающие сборку и каталитическую активность дыхательных комплексов. Точечные замены в субъединицах комплекса I, такие как m.11778G>A в гене MT-ND4, являются основной причиной наследственной оптической нейропатии Лебера [11]. Модификация свойств протонного канала АТФ-синтазы вследствие мутации m.8993T>G в гене MT-ATP6 приводит к развитию синдрома нейрогенной мышечной слабости с атаксией и пигментным ретинитом (NARP) или более тяжелой фенотипической формы — синдрома Милса [12]. Отдельно следует отметить роль крупных делеций мтДНК, обусловливающих классический триадный синдром Кернса — Сейра, характеризующийся прогрессирующей офтальмоплегией, пигментной ретинопатией и сердечными блокадами [13].

Важным аспектом митохондриальной генетики остается сложная система ядерно-митохондриальных взаимодействий. Многие наследственные формы истощения мтДНК обусловлены не изменениями в самом митохондриальном геноме, а мутациями в ядерных генах, кодирующих белки репликации и поддержания геномной стабильности, в частности POLG, TK2 и DGUOK [14]. Так, дефицит митохондриальной тимидинкиназы 2 (TK2) нарушает баланс внутриорганеллярного пула дезоксинуклеотидтрифосфатов, что блокирует репликацию мтДНК и приводит к развитию тяжелых прогрессирующих миопатий [15].

Терапевтические подходы: от редактирования генома к РНК-технологиям

Одним из наиболее перспективных направлений коррекции митохондриальных заболеваний является селективная элиминация мутантных молекул мтДНК с использованием программируемых нуклеаз. Ввиду фундаментального ограничения классической системы CRISPR-Cas9, связанного с невозможностью эффективной доставки направляющей РНК (gRNA) в митохондриальный матрикс [16], основное внимание в настоящее время сосредоточено на альтернативных ферментативных платформах. К ним относятся митоTALEN и митоZFNs [17], митохондриально-адаптированные нуклеазы платформы ARCUS [18], а также системы цитозинового (DdCBE) и аденинового (TALED) базового редактирования, позволяющие осуществлять точечные модификации без формирования двунитевых разрывов [19][20].

Значимым клиническим достижением в этой сфере стало успешное завершение III фазы клинических испытаний и последующее одобрение регуляторными органами препарата лендоген нолпарловек (rAAV2/2-ND4), предназначенного для генной терапии наследственной оптической нейропатии Лебера [21].

Активно разрабатываются новые подходы, основанные на использовании мРНК-технологий и направленной доставки терапевтических нуклеиновых кислот внутрь митохондрий. Для преодоления двойной мембранной преграды митохондрий применяются специализированные векторные системы, среди которых наиболее эффективной оказалась платформа MITO-Porter, которая обеспечивает транспорт нуклеиновых кислот в митохондриальный матрикс с эффективностью более 80 % [22][23]. Экспериментальные исследования показали, что применение липидных наночастиц (LNP) для доставки мРНК в условиях метаболического стресса может приводить к локальному снижению экспрессии митохондриальных генов. При этом дефицит аполипопротеина E (APOE) может значительно смягчать эти эффекты [24][25].

Предполагается, что наблюдаемые биологические феномены опосредованы через сложную взаимосвязь модификаций липидного обмена [26], активации воспалительных сигнальных каскадов [27] и регуляции процессов митофагии [28].

В качестве дополнения к молекулярно-генетическим подходам рассматривается стратегия митохондриальной трансплантации, демонстрирующая выраженную терапевтическую эффективность в экспериментальных моделях ишемического повреждения миокарда у грызунов [29]. Тем не менее клиническая трансляция данного метода при наследственных митохондриальных патологиях остается ограниченной и требует решения фундаментальных проблем иммунологической совместимости, а также разработки стандартизированных протоколов изоляции, верификации функциональной активности и безопасной интеграции трансплантируемых органелл в реципиентные ткани.

Популяционная генетика APOE как ключ к персонализации терапии

Ген APOE характеризуется полиморфизмом трех основных аллелей: ε3 (популяционная частота 70–85 %), ε4 (варьирует от <5 % до >40 % в зависимости от региона) и ε2 (5–10 %) [30]. Несмотря на установленную роль аллеля ε4 как наиболее значимого генетического фактора риска развития болезни Альцгеймера, его высокая распространенность в африканских популяциях указывает на наличие исторических эволюционных преимуществ, обеспечивших закрепление данного варианта в процессе естественного отбора [31–34].

В функциональном и клиническом аспектах изоформа APOE4 существенно модулирует эффективность и профиль безопасности терапевтических вмешательств. В частности, APOE4 нарушает транспорт ядерно-кодируемых белков в митохондриальный матрикс через транслоказные комплексы TOM/TIM, формируя клеточный фенотип митохондриально-ядерной дисгармонии [35].

Гомозиготное носительство аллелей ε4/ε4 не только значительно увеличивает риск развития амилоид-ассоциированных отеков головного мозга, но и при использовании моноклональных антител, повышает его в 3–5 раз [36]. Однако связь аллеля ε4 с вероятностью нейродегенерации существенно варьируется в зависимости от этнопопуляции [37]. Это указывает на необходимость учета генетических особенностей при создании персонализированных терапевтических подходов.

Обобщение результатов

Анализ закономерностей в организации митохондриального генома открывает новые горизонты для синтетической биологии и медицины.

Принципы экстремальной компактности могут быть использованы при создании минимальных синтетических конструкций мтДНК [38]. В клинической практике концепция митонуклеарной коадаптации закладывает теоретическую основу для прогнозирования совместимости донорских митохондрий с ядерным генетическим фоном реципиента, что важно для оптимизации протоколов митохондриальной заместительной терапии.

Структурные особенности, связанные с высоким GC-составом функциональных доменов, позволяют разработать новые подходы к стабилизации терапевтических РНК-препаратов. Однако их практическое применение требует обязательной экспериментальной проверки на моделях млекопитающих.

ОБСУЖДЕНИЕ

Интегративная интерпретация данных

Данный обзор подчеркивает объединение эволюционной биологии, генной инженерии и популяционной генетики. Раньше экстремальная компактизация мтДНК насекомых изучалась только в рамках сравнительной геномики. Теперь же она открывает новые возможности для преодоления ограничений AAV-векторов. Одновременно с этим информация о том, как изоформы APOE влияют на митохондриальный транспорт и реакцию на мРНК-технологии, закладывает основу для персонализированного подхода к выбору пациентов для митохондриальной терапии.

Выявленные пробелы в литературе

Несмотря на быстрый прогресс, остается недостаточным количество сравнительных исследований, тестирующих биоинспирированные векторы на основе принципов компактизации мтДНК насекомых. Данные о взаимодействии изоформ APOE с митохондриальным импортным аппаратом ограничены преимущественно моделями in vitro и требуют валидации на когортах с учетом этнической стратификации.

Ограничения обзора

Как scoping review, данная работа не включает формальную оценку риска систематических ошибок включенных исследований и не выполняет количественный синтез данных. Часть клинических испытаний (особенно с мРНК-платформами и базовыми редакторами) находится на ранних фазах, что ограничивает выводы об эффективности. Языковые и временные ограничения поиска могут повлиять на полноту анализа.

Приоритеты будущих исследований

Необходимо проведение кросс-видовых валидаций компактных мтДНК-элементов на клеточных моделях млекопитающих, разработка алгоритмов предсказания митонуклеарной совместимости на основе комплексного анализа генотипов APOE и полиморфных вариантов гена ApoB, а также проспективные когортные исследования, оценивающие безопасность мРНК-платформ у носителей аллеля ε4 APOE с учетом полиморфизма ApoB, потенциально модулирующего липидный обмен и митохондриальную функцию [39][40].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Митохондриальная медицина переходит от паллиативных подходов к этиотропной терапии. Успешное применение AAV-векторов для синдрома Лебера и доклинические успехи митоTALEN/DdCBE открывают эру геномного редактирования мтДНК. Популяционная генетика APOE служит примером того, как эволюционно выгодный полиморфизм становится фактором риска в измененной среде и модификатором ответа на терапию. Сравнительная биология пчелы продолжает поставлять нетривиальные решения для синтетической биологии и регенеративной медицины. Объединение эволюционного мышления, технологий редактирования генома и тонкого понимания митохондриальной биологии обещает в ближайшее десятилетие привести к созданию эффективной персонализированной терапии митохондриальных заболеваний.

Список литературы

1. Tricco AC, Lillie E, Zarin W, O’Brien KK, Colquhoun H, Levac D, Moher D, Peters MDJ, Horsley T, Weeks L, Hempel S, Akl EA, Chang C, McGowan J, Stewart L, Hartling L, Aldcroft A, Wilson MG, Garritty C, Lewin S, Godfrey CM, Macdonald MT, Langlois EV, Soares-Weiser K, Moriarty J, Clifford T, Tunçalp Ö, Straus SE. PRISMA Extension for Scoping Reviews (PRISMA-ScR): Checklist and Explanation. Ann Intern Med. 2018;169(7):467–473. https://doi.org/10.7326/M18-0850. Epub 2018 Sep 4. PMID: 30178033.

2. Anderson S, Bankier AT, Barrell BG, de Bruijn MH, Coulson AR, Drouin J, Eperon IC, Nierlich DP, Roe BA, Sanger F, Schreier PH, Smith AJ, Staden R, Young IG. Sequence and organization of the human mitochondrial genome. Nature. 1981;290(5806):457–465. https://doi.org/10.1038/290457a0

3. Wallace DC, Chalkia D. Mitochondrial DNA genetics and the heteroplasmy conundrum in evolution and disease. Cold Spring Harb Perspect Biol. 2013;5(11):a021220. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a021220

4. Gorman GS, Chinnery PF, DiMauro S, Hirano M, Koga Y, McFarland R, Suomalainen A, Thorburn DR, Zeviani M, Turnbull DM. Mitochondrial diseases. Nat Rev Dis Primers. 2016;2:16080. https://doi.org/.1038/nrdp.2016.80

5. Crozier RH, Crozier YC. The mitochondrial genome of the honeybee Apis mellifera: complete sequence and genome organization. Genetics. 1993;133(1):97–117. https://doi.org/10.1093/genetics/133.1.97

6. Wei SJ, Shi M, Chen XX, Sharkey MJ, van Achterberg C, Ye GY, He JH. New views on strand asymmetry in insect mitochondrial genomes. PLoS One. 2010;5(9):e12708. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0012708

7. Motta EVS, Moran NA. The honeybee microbiota and its impact on health and disease. Nat Rev Microbiol. 2024;22(3):122–137. https://doi.org/10.1038/s41579-023-00990-3

8. Yarham JW, Al-Dosary M, Blakely EL, Alston CL, Taylor RW, Elson JL, McFarland R. A comparative analysis approach to determining the pathogenicity of mitochondrial tRNA mutations. Hum Mutat. 2011;32(11):1319–1325. https://doi.org/10.1002/humu.21575

9. Goto Y, Nonaka I, Horai S. A mutation in the tRNA(Leu)(UUR) gene associated with the MELAS subgroup of mitochondrial encephalomyopathies. Nature. 1990;348(6302):651–653. https://doi.org/10.1038/348651a0

10. Shoffner JM, Lott MT, Lezza AM, Seibel P, Ballinger SW, Wallace DC. Myoclonic epilepsy and ragged-red fiber disease (MERRF) is associated with a mitochondrial DNA tRNA(Lys) mutation. Cell. 1990;61(6):931–937. https://doi.org/10.1016/0092-8674(90)90059-n

11. Wallace DC, Singh G, Lott MT, Hodge JA, Schurr TG, Lezza AM, Elsas LJ 2nd, Nikoskelainen EK. Mitochondrial DNA mutation associated with Leber’s hereditary optic neuropathy. Science. 1988;242(4884):1427–1430. https://doi.org/10.1126/science.3201231

12. Holt IJ, Harding AE, Petty RK, Morgan-Hughes JA. A new mitochondrial disease associated with mitochondrial DNA heteroplasmy. Am J Hum Genet. 1990;46(3):428–433.

13. Zeviani M, Moraes CT, DiMauro S, Nakase H, Bonilla E, Schon EA, Rowland LP. Deletions of mitochondrial DNA in Kearns-Sayre syndrome. Neurology. 1988;38(9):1339–1346. https://doi.org/10.1212/wnl.38.9.1339

14. Copeland WC. Inherited mitochondrial diseases of DNA replication. Annu Rev Med. 2008;59:131–146. https://doi.org/10.1146/annurev.med.59.053006.104646

15. Saada A, Shaag A, Mandel H, Nevo Y, Eriksson S, Elpeleg O. Mutant mitochondrial thymidine kinase in mitochondrial DNA depletion myopathy. Nat Genet. 2001;29(3):342–344. https://doi.org/10.1038/ng751

16. Gammage PA, Moraes CT, Minczuk M. Mitochondrial Genome Engineering: The Revolution May Not Be CRISPR-Ized. Trends Genet. 2018;34(2):101–110. https://doi.org/10.1016/j.tig.2017.11.001

17. Bacman SR, Williams SL, Pinto M, Peralta S, Moraes CT. Specific elimination of mutant mitochondrial genomes in patient-derived cells by mitoTALENs. Nat Med. 2013;19(9):1111–1113. https://doi.org/10.1038/nm.3261

18. Zekonyte U, Bacman SR, Smith J, Shoop W, Pereira CV, Tomberlin G, Stewart J, Jantz D, Moraes CT. Mitochondrial targeted meganucle ase as a platform to eliminate mutant mtDNA in vivo. Nat Commun. 2021;12(1):3210. https://doi.org/10.1038/s41467-021-23561-7

19. Mok BY, de Moraes MH, Zeng J, Bosch DE, Kotrys AV, Raguram A, Hsu F, Radey MC, Peterson SB, Mootha VK, Mougous JD, Liu DR. A bacterial cytidine deaminase toxin enables CRISPR-free mitochondrial base editing. Nature. 2020;583(7817):631–637. https://doi.org/10.1038/s41586-020-2477-4

20. Cho SI, Lee S, Mok YG, Lim K, Lee J, Lee JM, Chung E, Kim JS. Targeted A-to-G base editing in human mitochondrial DNA with programmable deaminases. Cell. 2022;185(10):1764–1776.e12. https://doi.org/10.1016/j.cell.2022.03.039

21. Newman NJ, Yu-Wai-Man P, Subramanian PS, Moster ML, Wang AG, Donahue SP, Leroy BP, Carelli V, Biousse V, Vignal-Clermont C, Sergott RC, Sadun AA, Rebolleda Fernández G, Chwalisz BK, Banik R, Bazin F, Roux M, Cox ED, Taiel M, Sahel JA; LHON REFLECT Study Group. Randomized trial of bilateral gene therapy injection for m.11778G>A MT-ND4 Leber optic neuropathy. Brain. 2023;146(4):1328–1341. https://doi.org/10.1093/brain/awac421

22. Yamada Y, Akita H, Kamiya H, Kogure K, Yamamoto T, Shinohara Y, Yamashita K, Kobayashi H, Kikuchi H, Harashima H. MITO-Porter: A liposome-based carrier system for delivery of macromolecules into mitochondria via membrane fusion. Biochim Biophys Acta. 2008;1778(2):423–432. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2007.11.002

23. Yamada Y, Harashima H. Targeting the Mitochondrial Genome Via a MITO-Porter: Evaluation of mtDNA and mtRNA Levels and Mitochondrial Function. Methods Mol Biol. 2021;2275:227–245. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1262-0_14

24. Pardi N, Hogan MJ, Porter FW, Weissman D. mRNA vaccines — a new era in vaccinology. Nat Rev Drug Discov. 2018;17(4):261–279. https://doi.org/10.1038/nrd.2017.243

25. Cho SH, Choi B, Lee J, Lee YS, Baek MO, Lee YJ, Gil CO, Choi MK, Khaliq SA, Maham S, Hyun JK, Roh G, Choi H, Lee S, Bae SH, Lee S, Park HJ, Ahn JH, Lee NY, Kang BC, Seo YK, Lim BK, Nam JH, Rho M, Yoon MS. ApoE deficiency protects from mRNA vaccine-induced mitochondrial dysfunction at the injection site under metabolic stress. Theranostics. 2025;15(17):8964–8984. https://doi.org/10.7150/tno.119545

26. Wang C, Lu J, Sha X, Qiu Y, Chen H, Yu Z. TRPV1 regulates ApoE4-disrupted intracellular lipid homeostasis and decreases synaptic phagocytosis by microglia. Exp Mol Med. 2023;55(2):347–363. https://doi.org/10.1038/s12276-023-00935-z

27. Yu Q, Du F, Puerta-Alvarado V, Goodman JH, Waites CL. APOE4 exacerbates glucocorticoid stress hormone-induced tau pathology via mitochondrial dysfunction. Cell Death Dis. 2026;17(1):419. https://doi.org/10.1038/s41419-026-08543-1

28. Schmukler E, Solomon S, Simonovitch S, Goldshmit Y, Wolfson E, Michaelson DM, Pinkas-Kramarski R. Altered mitochondrial dynamics and function in APOE4-expressing astrocytes. Cell Death Dis. 2020;11(7):578. https://doi.org/10.1038/s41419-020-02776-4

29. Doulamis IP, McCully JD. Mitochondrial Transplantation for Ischemia Reperfusion Injury. Methods Mol Biol. 2021;2277:15–37. https://doi.org/10.1007/978-1-0716-1270-5_2

30. Mahley RW, Rall SC Jr. Apolipoprotein E: far more than a lipid transport protein. Annu Rev Genomics Hum Genet. 2000;1:507–537. https://doi.org/10.1146/annurev.genom.1.1.507

31. Corbo RM, Scacchi R. Apolipoprotein E (APOE) allele distribution in the world. Is APOE*4 a ‘thrifty’ allele? Ann Hum Genet. 1999;63(Pt 4):301–310. https://doi.org/10.1046/j.1469-1809.1999.6340301.x

32. Trumble BC, Stieglitz J, Blackwell AD, Allayee H, Beheim B, Finch CE, Gurven M, Kaplan H. Apolipoprotein E4 is associated with improved cognitive function in Amazonian forager-horticulturalists with a high parasite burden. FASEB J. 2017;31(4):1508–1515. https://doi.org/10.1096/fj.201601084R

33. Itzhaki RF. Herpes simplex virus type 1 and Alzheimer’s disease: possible mechanisms and signposts. FASEB J. 2017;31(8):3216–3226. https://doi.org/10.1096/fj.201700360

34. Huebbe P, Rimbach G. Evolution of human apolipoprotein E (APOE) isoforms: Gene structure, protein function and interaction with dietary factors. Ageing Res Rev. 2017;37:146–161. https://doi.org/10.1016/j.arr.2017.06.002

35. Orr AL, Kim C, Jimenez-Morales D, Newton BW, Johnson JR, Krogan NJ, Swaney DL, Mahley RW. Neuronal Apolipoprotein E4 Expression Results in Proteome-Wide Alterations and Compromises Bioenergetic Capacity by Disrupting Mitochondrial Function. J Alzheimers Dis. 2019;68(3):991–1011. https://doi.org/10.3233/JAD-181184

36. Cummings J, Apostolova L, Rabinovici GD, Atri A, Aisen P, Greenberg S, Hendrix S, Selkoe D, Weiner M, Petersen RC, Salloway S. Lecanemab: Appropriate Use Recommendations. J Prev Alzheimers Dis. 2023;10(3):362–377. https://doi.org/10.14283/jpad.2023.30

37. Rajabli F, Feliciano BE, Celis K, Hamilton-Nelson KL, Whitehead PL, Adams LD, Bussies PL, Manrique CP, Rodriguez A, Rodriguez V, Starks T, Byfield GE, Sierra Lopez CB, McCauley JL, Acosta H, Chinea A, Kunkle BW, Reitz C, Farrer LA, Schellenberg GD, Vardarajan BN, Vance JM, Cuccaro ML, Martin ER, Haines JL, Byrd GS, Beecham GW, Pericak-Vance MA. Ancestral origin of ApoE ε4 Alzheimer disease risk in Puerto Rican and African American populations. PLoS Genet. 2018;14(12):e1007791. https://doi.org/10.1371/journal.pgen.1007791

38. Renteln M. A synthetic mitochondrial-based vector for therapeutic purposes. Med Hypotheses. 2018;117:28–30. https://doi.org/10.1016/j.mehy.2018.05.014

39. Почешхова Э.А. Сравнение региональной изменчивости Евразии по ДНК и классическим маркерам. Медицинская генетика. 2008;7(3):41–48.

40. Verbenko DA, Pocheshkhova EA, Balanovskaya EV, Marshanija EZ, Kvitzinija PK, Limborska SA. Polymorphisms of D1 S80 and 3’ApoB minisatellite loci in Northern Caucasus populations. J Forensic Sci. 2004;49(1):178–180.


Об авторе

С. Д. Нурбаев
Товарищество с ограниченной ответственностью «Altai Honey»
Казахстан

Нурбаев Серик Долдашевич — доктор биологических наук, профессор, научный консультант

ул. Вавилова, д. 14, г. Алтай, 070803



Рецензия

Для цитирования:


Нурбаев С.Д. Митохондриальный геном как терапевтическая мишень — от эволюционной биологии пчелы к персонализированной медицине человека: систематическое обзорное исследование литературы по методологии scoping review. Кубанский научный медицинский вестник. 2026;33(3):62-70. https://doi.org/10.25207/1608-6228-2026-33-3-62-70

For citation:


Nurbaev S.D. Mitochondrial genome as a therapeutic target — from evolutionary biology of the honeybee to personalized human medicine: A scoping review. Kuban Scientific Medical Bulletin. 2026;33(3):62-70. (In Russ.) https://doi.org/10.25207/1608-6228-2026-33-3-62-70

Просмотров: 159

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 1608-6228 (Print)
ISSN 2541-9544 (Online)