ОЦЕНКА МЕТАСТАТИЧЕСКОГО НЕОГЕНЕЗА В АСЦИТИЧЕСКОМ ВЫПОТЕ ПУТЕМ АВТОМАТИЗИРОВАННОГО АНАЛИЗА БИОЛОГИЧЕСКИХ ЖИДКОСТЕЙ

Цель. Проведение автоматизированного анализа биологических жидкостей для оценки метастатического неогенеза в асцитических выпотах.

Материалы и методы. Проводился ретроспективный анализ 40 историй болезни пациентов с асцитическим синдромом неопухолевого (цирротического) и опухолевого генеза. Традиционное цитологическое исследование сопровождалось автоматизированным анализом выпотных жидкостей. Заключительный диагноз верифицировался с помощью инструментальных и патоморфологических методов. Статистическая обработка данных включала оценку критерия значимости межгрупповых различий.

Результаты. По сравнению с цирротическим асцитом при опухолевом выпоте статистически значимо (p30% в системе скрининга атипических клеток. В отсутствие острой воспалительной реакции наличие эозинофилов в выпоте следует интерпретировать как косвенный маркер опухолевого процесса. Согласно полученным данным, содержание нейтрофилов, лимфоцитов и моноцитов в асцитических жидкостях не зависит от природы процесса (p>0,05).

Заключение. Проанализированы диагностические возможности автоматизированного анализа асцитических жидкостей. В системе дифференциальной диагностики опухолевых и не опухолевых процессов наибольшей информативной ценностью обладали следующие параметры: TCN, HF, наличие эозинофилов (EO).

Конфликт интересов: авторы заявили об отсутствии конфликта интересов.

1. Долгов В.В., Шабалова И.П., Миронова И.И., Джангирова Т.В., Коротаев А.Л. Выпотные жидкости. Лабораторный анализ. М.: Триада; 2006: 243.

2. Danise P., Maconi M., Rovetti A. et al. Cell counting of body fluids: comparison between three automated haematology analysers and the manual microscope method. Int. J. Lab. Hematol. 2013; 35(6): 608–613. DOI: 10.1111/ijlh.12093

3. Кишкун А.А. Препятствия на пути централизации клинических лабораторных исследований. Менеджер здравоохранения. 2014; 11: 11–26.

4. Ai T., Tabe Y., Takemura H. et al. Novel flowcytometry-based approach of malignant cell detection in body fluids using an automated hematology analyzer. PLoS One. 2018; 13(2): e0190886. DOI: 10.1371/journal.pone.0190886

5. Burri E., Schulte F., Muser J. et al. Measurement of calprotectin in ascitic fluid to identify elevated polymorphonuclear cell count. World. J. Gastroenterol. 2013; 19(13): 2028–2036. DOI: 10.3748/wjg.v19. i13.2028

6. Cho Y.U., Chi H.S., Park S.H. et al. Body fluid cellular analysis using the Sysmex XN-2000 automatic hematology analyzer: focusing on malignant samples. Int. J. Lab. Hematol. 2015; 37(3): 346–356. DOI: 10.1111/ ijlh.12292

7. Fleming C., Brouwer R., Lindemans J., de Jonge R. Validation of the body fluid module on the new Sysmex XN-1000 for counting blood cells in cerebrospinal fluid and other body fluids. Clin. Chem. Lab. Med. 2012; 50(10): 1791–1798. DOI: 10.1515/cclm-2011-0927

8. Labaere D., Boeckx N., Geerts I. et al. Detection of malignant cells in serous body fluids by counting high-fluorescent cells on the Sysmex XN-2000 hematology analyzer. Int. J. Lab. Hematol. 2015; 37(5): 715–722. DOI: 10.1111/ijlh.12393

9. Szamosi D., Bautista J., Cornbleet J. et al. Body fluid analysis for cellular composition; Approved guideline. CLSI document H56-A. 2006: 26.

10. Rimola A., García-Tsao G., Navasa M. et al. Diagnosis, treatment and prophylaxis of spontaneous bacterial peritonitis: a consensus document. J. Hepatol. 2000; 32(1): 142–153.

11. Xu W., Yu Q., Xie L. et al. Evaluation of Sysmex XN-1000 hematology analyzer for cell count and screening of malignant cells of serous cavity effusion. Medicine (Baltimore). 2017; 96(27): e7433. DOI: 10.1097/MD.0000000000007433